practica 8 y 9 "reacciones febriles" "aglutinacion en suero sanguineo"

la practica comenzo a las 8:00 am en el laboratorio de quimica por lo que el alumno debio entrar portando el equipo de bioseguridad para evitar asi una sancion.
se lleno el vale de material:
*microscopio
*laminilla escavada para RF
*reactivos febriclin
*tubo de ensaye con tapon rojo
*palillos de madera
*torundas de algodon alcoholizadas
*centrifuga
*pipeta pasteur
*vulvo para pipeta pasteur
*papel blanco para vestir mesa
*torniquete
*jeringa de 10 ml
*gradilla
*tubo de ensaye con tapon morado
*placa de porcelana escavada
*papel secante
*reactivos tipificadores A,B,D.

la primera practica fue aglutinacion en sangre, por lo se empezo tomando la muetra a dos pacientes por mesa, se extrajp 8ml de sangra a cada uno y fueron colocadon 4ml al tubo con tapon morado y luego 4 al rojo , se etiquetaron con el nombre del paciente y la hora, tomando el tiempo que tarde en coagularse( lo normal es entre 2 y 8 min)
del tubo con tapon morado fueron tomadas tres gotas de sangre con la pipeta pasteur y fueron punteadas en tres diferentes excavaciones en la lamina de porcelana.
una vez punteados, se le coloco a cada uno una gota de reactivo tipificadorA,B y D en ese orden , se revolvieron con los palillos de madera y se menearon hasta ver una aglutinacion.se tomo nota y seguimos con la otra practica.
comenzamos la siguiente practica colocando el tubo de ensaye de tapon rojo en la centrifuga para asi separar el plasma y el suero.
en el tubo de ensaye vacio se coloco el suero; el plasma fue desechado como lo manda la regla NOM-087.
luego se punteo el suero con la pipeta pasteur en la laminilla de cristal para RF y a cada gota se le aplico un reactivo febriclin en el siguiente orden:
*O
*H
*A
*B
*Brucella
*Proteus 0x19
cuendo se le fueron aplicadas se mezclaron con los palillos de madera y se hizo un muñequeo hasta empezar a ver una aglutinacion, se observaron al microscopioy se anoto lo observado.
se limpio el material utilizado y se guardo el equipo de laboratorio.

((men&women))!!♥

practica 6 y 7 "tincion de gram" "observacion microscopica"

el alumno entra a las 10 am al laboratorio portando el equipo de bioseguridad.
los materiales requeridos para esta practica fueron los siguientes:

• microscopio optico
• mecheros de bunsen
• gas LP
• aceite de inmersion
• cristal violeta
• lugol
• alcohol
• fascina
• agua
• papel secante

lo primero que se hizo fue agarrar nuestro frotis anteriormente realizado.el frotis fue puesto por 1' en el cristal violeta, 1' por el lugo, se enjuago en el alcohol, hasta que no quedara rastro del cristal violeta ni lugol, despues fue puesto por 1' por fascina y cuando estuvo listo se enjuago en agua de la llave y se dejo secar al aire libre.

cuando estuvo ya seca se ll fue colocada una gota de aceite de inmersion, para luego observar la tincion en el microscopio a 100x. se registro lo que se vio y limpio el objetivo del microscopio.

((men&women))!!♥

practica 5 " frotis"

los alumno tecnicos en laboratorio entramos al laboratorio de qimica a las 9:00 pero no fue si no hasta las 9:35 que se empezo la practica. portando nuetro equipo de bioseguridad, empezamos llenando el vale de material:
*mecheros de bunsen
*hojas blancas
*maskingtape
*vaso de presipitado 25ml
*agua destilada 25ml
*asas bacteriologicas
*portaobjetos
*cajas petri con medio de cultivo
*encendedor

cuando nos fueron entregados todos los materiales, se encendieron los mecheros y se abrieron las cajas petri.
despues cada quie tomo una asa y la esterilizo en la flama azul del mechero.luego se tomo una gota de agua destilada con el asa y se puso en el centro del portaobjetos, se volvio a pasar por la flama y ahora se agarro una pequeña muestra y se esparcio por el portaobjetos de izquierda a derecha hasta qie quedara casi transparente.
una vez esparcida se paso varias veces por el mechero haciendo un muñequeo para que no se nos quemara la muestra.
ya hechas todas las muestras se etiquetaron con el numero de integrante y de mesa.
se envolvieron uno por uno en manera de fila en papel secante, se etiquetaron con el numero de mesa y se entregaron.


((men&women)) !!♥

practica 4 "observacion macroscopica"

la practica se empezo a las 8:30. entramos como acostumbradamente portando nuestro equipo de bioseguridas correctamente.
lo primero que se hizo fue llenar el vale de material, los cuales fueron:
> cajas petri con siembra
> papel para vestir mesa
>maskingtape
>mechero de bunsen
>encendedor
>pie de rey o vernier

despues de eso se habilitaron las lineas de gas LP, las cuales las llaves se encuntranm debajo de la mesa, se vistio la mesa con el papel blanco, se encendieron los mecheros.
se nos entrgaron nuestro medio de cultivo y se abrieron en el campo de esterilizacion.
cada integrante observo su caja, registrando lo que vio, y olio, y, si se habia formado una colonia bacteriana, se regitro su color y textura.


((men&women))!!♥

practica 3 " siembra"

entramos al laboratorio de quimica a las 10 am portando el equipo de bioseguridad correctamente y tomando nuestro sitio en la mesa.
lo primero que hicimos fue tomar un vale de material y llenarlo con el nombre de los integrantes de la mesa y los materiales requeridos para esta practica los cuales fueron:
*medio de cultivo
*agua destilada
*asas bacteriologicas
*cubreobjetos
*tubo de ensaye conico
*tubo de ensaye con anticoagulante (tapon rojo)
*mecheros de bunsen
*jeringa
*torundas de algodon alcoholizadas
*hisopos
*gradilla
*papel blanco para vestir mesa
*masking tape
*centrifuga

se nos fueron solicitadas las siguientes muestras para sembrar:
>agua fresa
>sangre
>orina
>agua de verdura
>muestra interdigital
>muestra interdental
>agua de frijoles

a un integrante se le fue tomada la muetra de sangre y fue colocada en el tubo de ensaye con anticoagulante, en el tubo de ensaye conico fueron colocados 10 ml de orina, estas muestras fueron colocadas en la cetrifuga por 5 min a 1500 revoluciones.
durante este tiempo fueron encendidos los mecheros y la mesa fue vestida con el papel blanco.
cuando estuvieron listos las muestra centrifugadas, fueron colocadas en la gradilla y de ahi proseguimos a esterilizar en la flama azul de los mecheros las asas bacteriologicas hasta que el alambre se pusiera rojo, lo que nos indica que las asas estan listas.
continuamos, cada integrante tomo una caja petri con el medio de cultivo y tomo una muestra y la sembro de la manera que quisiera, la caja petri tiene que ser abierta solamente dentro del area de esterilizacion por radiacion( entre los dos mecheros) para que no se contamine.
cuando cada quien termino de sembrar, la caja petri se cerro y se etiqueto con el nombre de la persona que lo realizo, numero de mesa, nombre de muestra y nombre de tipo de siembra.
una vez terminado esto se apilaron y se cellaron todas las cajas con maskingtape, se etiquetaron con el numero de mesa, grupo y se entregaron para que depues fueran puestas en las estufas de encubacion.


((men&women))!!♥

practica1 y 2 "medios de cultivo" "esterilizacion"

esta practica se realizara desde las 8 am por lo que el alumno tendra que estar puntualmente en el laboratorio ya con el equipo de bioseguridad puesto. los metariales solictados son:

1. matraz erlenmeyer 250 ml
2. vaso de presipitados 250 ml
3. vaso de precipitados 50 ml
4. varilla de cristal
5. vidrio de reloj
6. cajas petri
7. espatula
8. balanza granataria
9. cintas maskingtape
10. cono de cristal
11. torundas de algodon
12. papel secante
13. medio de cultivo
14. regla de tres (suma, resta, multiplicacion, divicion)

lo primero que se hizo fue prender y encender el autoclave, colocando dentro de ella el agua destilada, se cubrio la mesa con papel blanco y se habilitan la lineas de gas LP.

despues se rehidrata el medio de cultivo de acuerdo a las instrucciones de la etiqueta utilizando la regla de tres anteriarmente vista :

19 x 9 = 171ml

___________________

36gr----1000ml

x gr----171ml

=6.156 gr de agar

despues pasamos el polvo en el vidrio de rejol, despues de eso, mesclamos el H2O destilada y el polvo en el matraz, agitamos con la varilla de cristal para asi evitar que queden grumos , luego los pasamos por ensima de los mecheros durante el tiempo que marco la etiqueta , se retiro y dejamos enfriar, se tapo con algodon y maskingtape. se etiqueto con el numero de mesa hora y fecha, nombre del cultivo. se metio el medio de cultivo en el autoclave para poder as empezar con el proceso de esterilizacion.

((men&women))!!♥

investigacion # 5

Salmonelosis:
Los signos y síntomas de una infección por salmonela aparecen generalmente 12 a 72 horas después de que los microbios entran en su cuerpo. Usted puede tener cualquiera de lo siguiente:· Dolor tipo cólico en el abdomen (estómago).
·Diarrea (evacuaciones flojas) que pueden tener
sangre.
·Fiebre o dolor de cabeza.
·Náusea (malestar estomacal) o vomito (devolver).
·Pérdida de peso o deshidratación (perder demasiado líquido)

Tifoidea:
La fiebre tifoidea esta caracterizada por fiebre alta constante (40º), sudoración profusa, gastroenteritis y diarrea. Menos comúnmente puede aparecer un sarpullido de manchas aplanadas de color rosáceo. Tradicionalmente se divide en cuatro fases, durando cada una de ellas una semana aproximadamente.Primera semana: Durante esta fase sube lentamente la temperatura con una bradicardia relativa, malestar general, dolor de cabeza y tos. Se ha observado Epistaxis en una cuarta parte de los casos. Hay leucopenia con eosinopenia y linfocitosis relativa.Segunda semana: Durante esta fase se produce la postración. Llegando la fiebre al culmen de los 40º C. Hay bradicardia con un pulso dicrótico. El delirio es frecuente (este delirio le da a la Fiebre Tifoidea el nombre de fiebre nerviosa). En un tercio de los pacientes se han observado puntos rojos en la parte inferior del pecho y abdomen. Hay respiración agitada. El abdomen esta distendido y dolorido en cuadrante derecho inferior. La diarrea puede también ocurrir en esta fase (6 - 8 deposiciones por día), de apariencia verde y olor característico con apariencia de puré de guisantes. No obstante el estreñimiento también es frecuente. El Bazo e hígado están inflamados con un aumento del nivel de transaminasas.Tercera semana: En esta semana si la fiebre tifoidea no se trata, las complicaciones son frecuentes: Hemorragias Intestinales debidas a la congestión de las Placas de Peyer (serias pero no necesariamente mortales); Perforación intestinal en el Íleon que puede dar lugar a peritonitis abscesos que pueden derivar en encefalitis, colecistitis, y endocarditis. La fiebre es alta.Finales de Tercera semana/Principios de la cuarta: La temperatura corporal se va restableciendo, pero el debilibitamiento aun persiste

Brucelosis:
Sintomatología inicial es fiebre, cefalea, dolor vertebral con afectación de las articulaciones sacroilíacas y adenopatías (inflamación de los ganglios) en el 50% de los afectados. En casos más graves puede producir endocarditis y neumonía. La fiebre suele subir durante la noche y disminuir durante el día, con períodos de oscilación (de ahí que se dé el nombre de fiebre ondulante a la enfermedad).

material practica 9

Pre analíticaMateriales:
1.-Tubo de ensaye con tapón morado
2.-Placa de porcelana excavada
3.-Wiltrobe
4.-Vasal
5.-Centrifuga
6.-Pipeta Pasteur y lóbulo
7.-Palillos de madera
8.- Torundas de algodón alcoholizadas
9.-microcentrifuga
10.-papel secante y para mesa de laboratorio
11.- GradillasReactivos:
1.- Tipificadores A, b, d
Tipo sanguíneo
Prueba de aglutinación en sangre (objetivo)

meterial practica 8 !!

AglutinaciónMateriales
1.-Lámina de cristal para reacciones febriles
2.-Tubo de ensaye con tapón rojo estéril
3.-Palillos de madera 2 o 3 por cada uno
4.-Torundas de algodón
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.-Pipeta Pasteur con lóbulo
8.- Papel secante
9.- Papel para mesa de laboratorio
10.- Torniquete
11.-GradillasReactivosFebriclinHO AB Bruc. Proteus 0x19º º
º º“Paciente” “sangre fresca”
Hoja de solicitud de examen Solicitud para examen de laboratorioIndicaciones del laboratorio para el paciente
Folio del registro“Inmunología” (portada del libro) con 3 bacterias:Salmonella, Brucella y ProteusAnalítica
1.- Técnica de extracción de sangre(Venopunción)
2.- separación del paquete sanguíneo y plasma
3.-Punteo de plasma en placa de cristal
4.-Mezclar plasma con reactivo de Febriclin para observar la reacción de aglutinación
5.-Observar macroscópicamente la laminilla a tras luz
6.-observar microscópicamente el proceso de aglutinación en objetivo 10x y 40x
7.-Reportamos en hoja de laboratorio:
Nombre del laboratorio, dirección, datos del paciente: nombre, edad, peso
Para Dr.
Tífico H= +- (positivo o negativo)
Tífico O= +-
Paratífico A=+-B
Brucella abortus= +-
Proteus 0x19 =+-

tinciones !!

Tincion
Los procedimientos que ponen de manifiesto diferencias entre las células bacterianas o en partes una célula se conoce como técnica de coloración diferenciales. Son algo mas que elaboradas que la técnica simple en la que las células se someten a una sola solución colorante o reactivo colorante.Las tinciones se combinan químicamente con el protoplasma bacteriano; si la célula no ha muerto el proceso termina de hacerlo. El método, por consiguiente, es bastante drástico y puede producir artificios.

Clasificcion de tinciones:
Tincion directa: En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato.
Tinción indirecta: En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada "mordiente" con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante. Usualmente los mordientes son sales, hidróxidos o alumbres de metales bivalentes o trivalentes.

Tinción por azul de metileno o cristal violeta: El azul de metileno es un buen colorante simple que actúa sobre todas las células bacterianas rápidamente y que no produce un color tan intenso que oscurezca los detalles celulares. Es especialmente útil para detectar la presencia de bacterias en muestras naturales, puesto que la mayor parte del material no celular no se tiñe.

Tinción de Gram: La tinción de Gram o coloración Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa.

Tinción de Ziehl Neelsen: La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, para la identificación de mocroorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis.Fue descrita por primera vez por dos médicos alemanes, Franz Ziehl (1859 to 1926), un bacteriólogo y Friedrich Neelsen (1854 to 1894), un patólogo.Este método se basa en que las paredes celulares de ciertos parásitos y bacterias contienen ácidos grasos (por ejemplo, el ácido micólico) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR. Las micobacterias como M. tuberculosis y M. marinum y los parásitos coccídeos como Cryptosporidium se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras.

medios de cultivo

concepto de medio de cultivo:


solucion que cuanta con los nutrientes necesarios para recuperar, multiplicar, aislar e identificar los microorganismos(bajo condiciones favorables de temperatura y pH), asi como para efectuar pruebas de suceptibilad. generalmente se presentan en forma de polvo fino o granular antes de ser preparados, al presentarse podemos encontrarlos en estado solido, semisolido y liquido.





* se clasifican en:


1.- segun su aspecto:


-fosiferoliquidos


- semi-solidos


-solidos duros o muy duros





2.-segun su uso:


-selectivos


-selectivos de enriquesimiento


-diferenciales


-para cultivar germenes anaerobios


-para medir potencia de antibioticos


-para transporte en micro


-para filtracion atraves de hongos y levaduras


-para cultivos de protozoarios





tipos de siembra en medio de cultivo:


*siembra de inoculo en placa:


1) tecnica de barry:para ello en el medio de cultivo previamente fundido en tubo se le añade el inoculo, se hemogeiniza, se vierte en la placa petri y se deja solidificar.

2)siembra de muestra liquida en placa con asa de drigaslsky: consiste en distribuir la muestra de manera uniforme por la superficie del medio de cultivo contenido en la placa. para ello adicionamos al medio solido un inuculo liquido

3)siembra por agotamiento o aislamiento en estria: se tomara con el asa de siembra una cantidad adecuada depositando el inoculo en uno de los extremos superiores la placa, se realizara movimientos en zig-zag sin levantar el asa hasta concluir la siembra en toda la placa.

4)siembra de los cuatro cuadrantes:con un rotulador dividimos la placa en cuadrantes iguales. con el asa extendemos por cada cuadrante el inoculo haciendo zig-zag sin flamear. finalmente observaremos como en el ultimo cuadrante las colonias se encuentran aisladas o separadas.

5)tecnica de los tres giros: se rotula la placa de forma analoga con el asa de platino y se siembra por estria la mitad superior de la placa. sin flamear giramos 90º y volvemos a sembrar ( asi hasta 3 veces)

6)siembra por estria en tubos con medio solido inclinados: con el asa de siembra se añade al tubo una cantidad de muestra realizando movimientos ascedentes en zig-zag.

7)siembra por picadura: con hilo de siembra introducir el asa en el medio de cultivo hasta el fondo en la zona central de este.

*paramesium *caracterizticas:

-caracterizticas del microorganismo denominado paramesium:
organizmo unicelular de vida libre, cubierto de cilios, los cuales son pequeñas extenciones moviles que utilza para desplazarse y para alimentarse. los paramesium se utilizan en algunos estudios anatomicos y geneticos.

.-caracterizticas de :
a) escherichia colin:
es quiza el organismo procarionte mas estudiado por el sr humano, se trata de una bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo, ademas produce vitaminas B y K. es un bacilo que reacciona negativamente a la tincion de gram, es anaerobico facultativo, movil por flagelos peritricos, no forma esporas, es capas de fermentar la glucosa y su prueba de IMVIC es ++-.

b)salmonella:
formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos peritricos y no desarrollan capsula ni espora. son bacterias moviles que producen sulfuro de hidrogeno. fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa y no producen ureasa.

c)proteus:
patogenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. normalmente no fermentan lactosa por razon de tener una galoctosidasa, tienen a ser organismos pleomorficas , no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa.

d) brucella abortus:
es una zoonosis ampliamente distribuida a nivel mundial que afecta principalmente al ganado bovino, causando esterilidad en machos y abortos en hembras en gestacion.

pie de rey (vernier)

1.-es un instrumento para medir dimenciones de objetos relativamente pequeños. se atribuye al cosmografo y matematico portugues que se llama:

pierre vernier

2.-en que año se le atribuye el pie de rey al cosmografo y matematico portugues:
(1492-1577)

3.-tambien se ha llamado pie de rey al:
vernier

4.-en que año se le atruibuye el pie de rey al geometra pedro vernier:

(1580-1637)

5.-que otro nombre recibe el origen del pie de rey?
nonio-nonius, vernier

1. Mordazas para medidas externas.
   
2. Mordazas para medidas internas.
   
3. Coliza para medida de profundidades.
   
4. Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
   
5. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
   
6. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
   
7. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
   
8. Botón de deslizamiento y freno.

practica III (pipeteo)

OBJETIVO:
el alumno tecnico en laboratorio clinico aprendera a pipetear correctamente y asi no tomar de la muestra que se quiere , tambien se medira la cantidad deseada con la ayuda de una probeta.

INSTRUCCIONES:
dentro del procedimiento se va a llevar a cabo la actividiad de pipetear y medir el liquido señalado.
el pipeteo debe ser de una forma ordenada y para ello se ocupa una probeta donde se depositara el liquido indicado INDIVIDUALMENTE!!.

antes de hacer bada se debe recibir cuidadosamente el material y verificar que no este en mal estado, para ello se debe llenar una forma de laboratorio de solicitud de materiales.

MARCO TEORICO (actividad)
llegamos al laboratorio con el equipo de bioseguridad ya puesto.
se nos entrego el material que utilizariamos el cual fue:

• probeta
• caja petri
• pipeta de thomas
• pipeta automatica
• pipeta
• pipeta
• pipeta

se empezo esta practica con cada uno de los integraantes de equipo, pero antes se nos separo en dos grupos para asi tener un mejor desempeño.

la idea de esta practica fue aprender a succionar el agua para no tragarnosla y saber si la medida que succionabamos era la deceada.

lo suguiente que hizimos fue con la pipeta de thomas agarrar una gota y ponerla en una caja petri para luego succionarla con la pipeta automatica y poder saber si la medida de una gota de agua son 10 microlitros.

luego las gotas las comparamos para ver con nuestros propios ojos que son iguales.

practica II (pesos y medidas)

OBJETIVO:
el alumno tecnico en laboratorio clinico aprendera a peasr y medir adecuadamente con la balanza granataria los materiales de criztaleria usados en las diferentes areas del alboratorio, teniendo como finalidad saber sus diferentes pesos al hacer un medio de cultivo o cualquier utra cosa.

INSTRUCCIONES:
dentro del procedimiento se va a llevar acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristaleria asi como las sustancias, solventes y otro tipo de reactivos que se soliciten.
Los pesos y medidas deben de ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza granataria donde se depositaran materiales ya indicados de forma individual registrando los pesos de cada uno.
una vez teniendo los pesos de los materiales se le aplicara un reactivo, ya sea solido, polvo o liquido y se registrara el peso con el reactivo y asi poder llegar a ocupar nuestro sistema metrico decimal y anglosajon.

antes de hacer nada se debe resibir cuidadosamente el material y verificar que no este en mal estado. Para ello se debe llenar una forma de laboratorio de solicitud de materiales.

MARCO TEORICO:
llegamos al laboratorio de quimica a las 8:00 de la mañana, entramos y nos pusimos nuestro equipo de bioseguridad (bata, guantes, cubrebocas,gorro).
primero, el profesor nos dio las indicaciones.
empezando por explicar la razon del equipo de bioseguridad.
nos llamo mesa por mesa para entregarnos el equipo de cristaleria:

• pipeta pasteur
• pipeta de sally
• vaso de presipitado
• lamina escabada
• tubos de ensayo
• probeta graduada 20º
• pipeta volumetrica 20º
• pipeta graduada 010 ml
• pipeta graduada 20º/1.00 ml
• caja petri
• vidrio de reloj
• balanza
• espatula

y empezamos midiendo cada uno de ellos con la balanza granataria

1. espatula - 49.2 gr
2. pipeta pasteur - 2.4 gr
3. vaso de presipitados - 4 gr
4. lamina escabada - 21.5 gr
5. tubo de ensayo - 7.2 gr
6. probeta graduada 20º - 134.4 gr
7. pipeta volumetrica 20º - 21.4 gr
8. pipeta graduada 010 ml - 14.6 gr
9. pipeta graduada 20º/1.00 ml
10. caja petri - 84.8 gr
11. vidrio de reloj - 17.2 gr

cuando terminamos de medir cada material, medimos el agua y la sal que dieron; para medirlo tuvimos que usar los materiales ya medidos y restamos el esultado obtenido con el resultado que ya teniamos.

• caja petri c/sal : 64.72 gr
• agua en el cristalizador : 90.7 gr
• gota de agua en lamina escabada : 21.51 gr
• papel con sal : 21.2 gr

RESULTADOS:

• agua: 90.7gr - 84.8 gr = 5.9 gr
• gota de agua : 21.51gr - 21.5gr = 0.01 gr
• sal: 21.2 gr - 0.04 gr = 21.16 gr

el profesor nos dio sal simulando un medio de ccultivo y nos pidio que con esta sacaramos cuatro cajas petri:

*medio de cultivo: agar dextrosa y papa = 39 gr -->1 lt

caja petri: 19 ml

39 gr ---> 1000 ml

X gr ---> 19 ml

X= (39 gr * 19 ml) /1000 ml = 0.741

para cuatro cajas: 2.964 gr de agar dextrosa y papa

actividad en clase...

I.- realizar los problemas correspondiantes al medio de cultivo (reactivo)

1.-anotar el nombre del medio de cultivo que se nos facilita, con todos los datos visibles en su etiqueta:
medio de cultivo:- agar de mueller hinton (pruebas de sensibilidad a antibioticos y cultivo de neisseria)
hecho por: DIBICO SA. DE CV.
*agente de diagnostico*
Reg.NO.01700R84SSA
contenido neto: 450 gr
No. lote: 6620035
caducidad: 1/mar/2007
catalogo:No. 1021-A

2.-leer cuidadosamente las indicaciones que contiene el bote del medio de cultivo.

3.- rehidratar el contenido para 1000 ml, del cual debera ocupar un porcentage para rehidratar en 250ml, 175ml y 138ml.

4.-las operaciones deben de ser con numeros basicos como +,-, / y multiplicacion.

*OPERACIONES:
1000 ml ---> 38 gr
250 ml ---> X gr

X= (250 ml * 38 gr)/1000 ml = 9.5 gr
__________________________________________________
1000 ml ---> 38 gr
175 ml ---> X gr
X=(175 ml * 38 gr)/1000 ml =6.65 gr

__________________________________________________
1000 ml ---> 38 gr
138 ml ---> X gr
X=(138 ml * 38 gr)/1000 ml=5.244 gr

camara de neubauer (recuento de eritrocitos)

Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )

La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente.. Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..

El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:

Mujeres:
3.9-5.6 millones/µl
Hombres:
4.5-6.5 millones/µl

TÉCNICAS DE CONTAJE CELULAR
Una suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.
Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.

El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.

En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.

La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos lineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.

Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :
concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)

En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases

Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.

Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidioEn la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células

1.se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.
2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.
3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).
4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.
5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.
6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.

7.El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.
Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):
Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):

Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n.
Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego:
siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida. Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).

Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de voluimen de un líquido.
La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran las cuadrículas de recuento.
La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.
Clases de cámaras:
- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)
- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.
- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.
- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)

pruebas serlogicas

es un examen de liquido seroso de la sangre que se utiliza para detectar la presencia de anticuerpos contra un microorganismo.

*temas centrales de pruebas serologicas:

• identificar anticuerpos (proteinas hechas por clases de globulos como respuesta a un antigeno, una proteina extraña en el cuerpo)
• investigar los problemas del tejido sistema inmunologico, como las enfermedades autoinmunologicas (cuando el sistema inmunologico del cuerpo ataca a sus propios tejidos) y los transtornos de inmunodeficiencia (cuando el sistema inmunologico del cuerpo no esta lo suficiente activo)
• determina la compatibilidad de la sangra para transfuciones.

*reacciones febriles:

son un grupo de pruebas de aglutinacion que investigan la presencia en el suero del paciente, de anticuerpos contra cepas bacterianas patogenas que causan la fiebre de tifiodea, paratifoidea y brucelosis.

*pruebas de embarazo:

Hay dos tipos: en sangre y en orina.Una prueba de embarazo en sangre puede detectar la HCG más o menos 10 días después de la fecundación, incluso antes del retraso de la menstruación. En la orina, la hormona tarda un poco más en manifestarse y es necesario esperar cinco o nueve días luego de la fecha en que debería haber llegado el periodo, teniendo en cuenta que la mujer tenga ciclos regulares.Para la prueba en sangre se extrae una muestra del líquido y se deposita en un tubo para su posterior análisis. En cuanto a las pruebas de orina, por lo general se recogen unas gotas para ponerlas en un lugar determinado.

*Apunte :]

iniciamos nuestra practica con la utilizacion de equipo de cristaleria en el termino de pipetas graduadas para realizar la actividad demandada de medicion de liquidos (volumen) de 1ml hasta 5ml.

en la cubeta para rotar de equipo cientifico llamado monarca se hace un baceado en cifra de microlitros (20 microlitros) y se utiliza la pipeta automatica graduada que en forma manual aplicamos la graduacion.

con la misma pipeta graduada se toma una muestra de liquido y se deposita en el vidrio de reloj y se compara contra la cubeta del rotor.

se comparan las medidas con todas las pipetas y los integrantes de la mesa deben de realizar la actividad de pipeteo.

*lamina de cristal para pruebas serologicas(inmunologia).
su caracteriztica es excabada y algunas solo tienen un circulo plastico para contener el liquido que se deposite en el.
la pipeta pasteur la ocupamos con su lobulo de extraccion se utiliza para el conteo de la lamina de cristal.
NOTA:
borrador de la actividad de cada practica.

* celulas *camara de neubauer

*CAMARA DE NEUBAUER:
es un instrumento utilizado en cultivo celular para realizar conteo de celulas en un medio de cultivo liquido. consta de 2 placas de vidrio, entre ellas se puede alojar un volumen conocido como liquido.
una de las placas posee una gradilla de dimenciones conocidos y que es visible al microscopio optico.
para contar las celulas de un cultivo liquido, se agrega una gota de este entre estas dos caoas y observar el microscopio optico la cantidad de celulas presentes en un campo determinado de la gradilla.

*CELULAS DE LOS TOMATES:
grandes celulas esfericas u ovoides, en cuyo citoplasma puede verse granulaciones enaranjadas que son los cromoplastos.
tambien puede verse grandes vacuolas incoloras en celulas menos alteradas en el nucleo.

*CELULAS DE LAS CEBOLLAS:
estan pueden ser vacuolas o bien burbujas de aire. celulas de catatilo de cebolla.

moleculas inorganicas

los minerales inorganicos son necesarios para la reconstruccion estructural de los tejidos corporales, ademas de que participan en procesos tales como la accion de los sistemas enzimaticos, contraccion muscular, reacciones nerviosas y coagulacion de la sangre. estos nutrientes minerales, que deben ser suministrados en la dieta, se dividen en dos clases:

• macroelementos:
• calcio
• fosforo
• magnesio
• sodio
• hierro
• yodo
• potasio

• microelementos:
• cobre
• cobalto
• manganesio
• fluor
• zinc

no contienen enlaces cobalentes carbono-carbono o carbono-H

EL AGUA:

consiste en un atomo de oxigeno y dos de hidrogeno unidos. El agua es un disolvente(liquido en el cual se disocian los solutos), que forman soluciones acuosas en el organismo. Participa en las reacciones quimicas:

• sintesis por deshidratacion:

reaccion quimica en el cual se elimina el agua de moleculas pequeñas para poder unirlas y formar una molecula mas grande.

• hidrolisis:

reaccion quimica en el cual se añade agua a las subunidades de una molecula grande para romperla en moleculas de menor tamaño.

• las reacciones quimicas siempre implican una transferencia de energia, como cuando se utiliza energia para sintetizar las moleculas de AYP
• las ecuaciones quimicas nos muestran como los reactivos interaccionan para formar productos; las flechas separan los reactivos de los productos.

ACIDOS, BASES Y SALES:

las moleculas de agua se disosian para generar el mismo numero de H+ (hidrogeniones) y OH-(iones hidroxilo)

• acidos:

sustancias que desplaz a el equilibrio H+/OH- a favor del primero; opuesto a base.

• base:

sustancia que desplaza el equilibrio H+/OH- a favor del segundo; denominada tambien alcali; opuesto al acido.

• pH:

expresion numerica de la concentracion relativa de hidrogeniones en una solucion acuosa.

*el pH 7 se considera neutro

*el pH superior a 7 se denomina basico; el Ph inferior a 7 es acido

1. la neutralizacion sucede cuando se mezclan acidos y bases para formar sales.
2. los tampones son sistemas quimicos que absorben el exeso de acido y bases y mantienen en este modo un pH relativamente estable.

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL industrial y de servicios no. 155

Segundo parcial

Nombre del alumno: JIMENEZ ARCE JAZMIN VANESSA


Nombre del profesor: VICTOR MANUEL ALFARO LOPEZ

PRACTICA 1
(Enfoque)

LABORATORIO DE QUIMICA.

Tijuana Baja California a 24 de marzo del 2009



OBJETIVO:

El alumno técnico en Laboratorio clínico aprenderá a usar y manejar adecuadamente el microscopio, aplicándolo en las diferentes áreas del laboratorio teniendo como finalidad el enfoque de los diferentes objetos que se le indiquen.



INTRODUCCION:

Los alumnos de laboratorio clínico, deben de utilizar el microscopio de forma adecuada aplicando los conocimientos anteriormente aprendidos, para que puedan obtener un mejor funcionamiento y manejo del mismo ya que en el podrán observar diferentes estructuras diminutas que no se alcanzan a ver de forma microscópica



MARCO TEORICO:

Primero a las 8:00 a.m. llegas puntualmente al laboratorio de análisis clínicos portando el equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubrebocas).
Antes de ocupar los materiales necesarios para la práctica se debe llenar una forma de laboratorio de solicitud de materiales.
Ya al llenar la forma entregaron los materiales necesarios…los cuales (en este caso) fueron la cámara de Neubanuer, el microscopio óptico, el cable de conector de la luz, portaobjetos.
Lo primero que se hizo fue enfocar hasta ver una cuadricula como esta:
Cada uno de los compañeros de equipo lo iba a enfocar por separado y luego dibujarlo.
Luego de que cada uno enfocara se puso sobre el portaobjetos uno de los materiales ya solicitados para la práctica, que fueron:

1. cebolla
2. tomate
3. lechuga
Cada uno de los materiales se enfoco y se hizo un dibujo de ellos:
















COMPARACIONES:
TOMATE:








CEBOLLA:





LECHUGA:





INDICE:


Objetivo_____________________1


Introducción_________________2


Marco teórico________________3


Comparaciones______________4

Preparar las siguientes muestras para su observación al microscopio:
MATERIALES:

• Muestra de Aceite



• Muestras de tomate



• Muestra de cebolla



• Muestra de sangre



• Muestra de vegetal (hoja)

Resultados de los campos microscópicos observados:
Conclusión
Debes de aplicar el número de objetivo donde obtuviste el enfoque adecuado, explicando brevemente tu experiencia obtenida. (Utiliza colores de madera para representar los gráficos).

AUTOCLAVE

Autoclave:
Es un herramienta que se ocupa para esterilizar materiales de laboratorio, reactivos o medios de cultivo y algunos otros elementos que se requieran esterilizar.La estructura de la autoclave es la base de material acerado e inoxidable y consta de los siguientes elementos :

1. Tapa de acero:
inoxidable con válvula de escape en su parte superior de la tapa y un manómetro con forma de reloj. El cual nos da un registro en libras y en grados centígrados y en la parte interna pende una manguerita corrugada que nos da la posibilidad de poder dejar salir el vapor que se encuentra en el interior de la autoclave.

2. La olla:
en su interior contiene un contenedor de aluminio con dos asas y una pequeña parrilla van a esterilizar en su parte interna tiene como sostén una parrilla de alambre que nos da la facilidad de contener la olla y que no rose con la resistencia que da la energía al equipo en le fondo se encuentra una resistencia que opera por medio de corriente alterna (amperes). La parte exterior de la autoclave se encuentra en un dispositivo de encendido una perilla de baja y alta temperatura y foco de advertencia luminoso color rojo.La parte superior de la autoclave cuenta con unos rilletes que están a base de roscas y que son la medida de seguridad al cerrar la tapa de la autoclave y debe manejarse en forma de cruz.Se va a operar en forma de cruz asegurándolos de tal manera que con ello podemos evitar un quemadura severa.La autoclave se debe manejar en su interior con agua destilada la cual se debe medir para registrar el volumen del liquido utilizado, el que debe ir al ras de la parrilla.

3. El proceso de esterilización:
de este equipo se lleva en ángulo plano “Tiempo” se ocupa sistema métrico decimal, volumen y masa además sistema anglosajón que es en libras y sistema de temperaturas también vamos a hacer conversiones de grados Celsius, kelvin y Fahrenheit.Este equipo alcanza una presión de 15 libras y una temperatura de 120 °C.

4. El proceso de esterilización:
debe de ser por tiempos, inmediatamente después de entrar al laboratorio se deben de organizar en cada una de sus practicas y preparar el rol de equipo de esterilización por calor húmedo. Iniciando la clase de laboratorio en practica se debe encender, habilitar con agua destilada el autoclave donde se ocupan 30 min de tiempo hasta que eleve su temperatura a punto de ebullición.

5. Purgar equipo:
Una vez que el equipo de autoclave esta cerrado con seguridad se deje elevar la presión y que esta llega hasta 5 libras y posteriormente se empezará a dejar salir presión a base de vapor manipulando con un guante de seguridad para una temperatura la válvula de escape y asegurarse que vuelva a quedar en 0 libras quedando así de esta manera purgado el equipo.Una vez purgado el equipo se deja subir la aguja del manómetro hata 15 libras y se registra el tiempo de elevación de esta temperatura ya esatndo las 15 libras se empieza a registrar el tiempo de 30 minutos, tiempo que nos da la esterilización de los productos.La presión de 15 libras que nos da 120 °C si se descuida puede ocasionar quemaduras severas.

EQUIPO DE ESTERILIZACION DE CALOR SECO

El equipo es para realizar trabajos inmediatos en cristalería, metales, todo tipo de esterilización pero ordenada para no tener errores en la actividad.Se opera con corriente alterna (amperes), 110 volteos y alcanza temperaturas de hasta 510 °C.

estructura (practica II)

ESTRUCTURA:

1. Portada


2. Objetivo


3. Intoduccion


4. Indice


5. Marco teorico


6. Conclusion


7. Fichas bibliograficas(desarrollo) bitacora


8. Glosario (no obligatorio)

TRABAJO DE INVESTIGACION:

• Unidad I

-microscopio (enfoque)

• Unidad II

-Pesos y medidas

El alumno debe llegar puntualmente al laboratorio de analisis clinicos y portando su equipo de bioseguridad (bata blanca, gorro, guantes y cubrebocas)

-Intrucciones a desarrollar dentro del laboratorio clinico:

materiales que se ocuparan en esta practica:

• pipetas graduadas, volumetricas


• buretas


• matraz de Erlendmeyer


• probetas


• pipeta de pasteur


• vaso de presipitados


• pipeta de sally


• pipeta de thomas

Dentro del procedimiento se va a llevar a cabo la actividad de pesar y medir loa materiales de cristaleria asi como las sustancias, solventes y otro tipo reactivos que se soliciten.

Los pesos y medidas deben de ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza granataria donde se depositaran materiales ya indicados de forma individual registrando los pesos de cada uno.

una vez teniendo los pesos de los materiales se les aplicara un reactivo, ya sea solido, liquido o polvo y se registrara el peso con el reactivo y asi poder llegar a ocupar nuestro sistema metrico decimal y anglosajon.

El alumno debera comparar el peso de 1ml de agua destilada contra el peso de 1ml de agua corriente y para ello ocupara pipetas graduadas.

introdusca la punta de la pipeta hasta el fondo del recipiente que contiene la solucion o solvente y succione hasta que el liquido haciendo en el interior de la pipeta hacia arriba en la marca superior.

la succion se puede hacer con la boca si es agua y con perilla de hule si son liquidos corrosivos.

en las pipetas de sally y de thomas se requiere utilizar una manguera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es en microlitros.

cotrolar la descarga de las pipetas graduadas con el dedo indice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco.

___________________________________________________________________

Realiza 5 determinaciones con pipetas de diferente capasidad y para comparar los resultados vacie el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capasidad de resibir el liquido qque contiene la pipeta.

Lave las pipetas y enjuague y enjuague con agua destilada, coloque la pipeta en un portapipetas o gradillas para que se estile y seque.

Antes de ocupor sus materiales de criztaleria (cualquiera que sea) se debe de rebizar cuidadosamente y verificar que no esten estrellados, britados o en mal estado para ello deben llenar una forma de laboratorio de solicitus de materiales.

competencias

Es competencias de la enseñanza media superior de la reforma integral(RIEMS)

1. Se conoce y valora a si mismo y aborda problemas y retos teniendo en cuenta los objetivos que persigue.

ATRIBUTOS

a) Enfrenta las dificultades que se le presentan y es conciente de sus valores, fortalezas y debilidades.

b) Identifica sus emociones, las maneja de manera contructiva y reconoce la necesidad de solicitar apoyo ante una situacion que lo rebaze.

c)Elige alternativas y cursos de accion con base de criterios sustentados y en el marco de un proyecto de vida.

d)Analiza criticamente los factores que influyen en su toma de decisiones.

e)Asume las consecuencias de sus comportamientos y decisiones.

f)Administra los recursos disponibles, teniendo en cuenta as restricciones para el logro de sus metas.

TAREA:

• Realizar un consenso de forma individual de la competencia señalada referente a las actividades realizadas en operacion de equipos de laboratorio iniciando con la linea del tiempo hasta el microscopio.

_____________________________________________________________

2)Es sencible al arte y participa en la apresiacion e interpretacion de sus expresiones en distintos generos.

ATRIBUTOS

a)Valora el arte como manifestacion de la belleza y expresion de ideas, sensaciones y emosiones.

b)Experimenta el arte como un hecho hisorico compartido que permite la comunicacion entre individuos y culturas en el tiempo y el espacio, a la vez que desarrolla un sentido de identidad.

c)Participa en practicas con el arte.

Microscopio óptico

Un microscopio óptico es un microscopio basado en lentes ópticas. El desarrollo de este aparato suele asociarse con los trabajos de Anton van Leeuwenhoek. Los microscopios de Leeuwenhoek constaban de una única lente pequeña y convexa, montada sobre una plancha, con un mecanismo para sujetar el material que se iba a examinar (la muestra o espécimen). Este uso de una única lente convexa se conoce como microscopio simple, en el que se incluye la lupa, entre otros aparatos ópticos. Partes del microscopio óptico y sus funciones
Ocular: lente situada cerca del ojo del observador. Amplía la imagen del objetivo.
Objetivo: lente situada cerca de la preparación. Amplía la imagen de ésta.
Condensador: lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación.
Diafragma: regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
Foco: dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
Lente ocular: Capta y amplia la imagen formada en los objetivos.
Tubo: es una càmara oscura unida al brazo mediante una cremallera.
Revólver: Es un sistema que coge los objetivos, y que rota para utilizar un objetivo u otro.
Tornillos macro y micrométrico: Son tornillos de enfoque, mueven la platina hacia arriba y hacia abajo. El macrométrico lo hace de forma rápida y el micrométrico de forma lenta. Llevan incorporado un mando de bloqueo que fija la platina a una determinada altura.
Platina: Es una plataforma horizontal con un orificio central, sobre el que se coloca la preparación, que permite el paso de los rayos procedentes de la fuente de iluminación situada por debajo. Dos pinzas sirven para retener el portaobjetos sobre la platina y un sistema de cremallera guiado por dos tornillos de desplazamiento permite mover la preparación de delante hacia atrás o de izquierda a derecha y viceversa. En la parte posterior de uno de los laterales se encuentra un nonius que permite fijar las coordenadas de cualquier campo óptico; de esta forma se puede acudir a el cuando interesa.
Sistema de iluminación

La fuente de luz 1, con la ayuda de una lente (o sistema) 2, llamada colector, se representa en el plano del diafragma iris de abertura 5 del condensador 6. Este diagrama se instala en el plano focal anterior del condensador 6 y puede variar su abertura numérica. El diagrama iris 3 dispuesto junto al colector 2 es el diafragma de campo. La variación del diámetro del diafragma de campo permite obtener su imagen igual al campo visual lineal del microscopio. La abertura numérica del condensador 6 supera, generalmente la de la abertura del objetivo microscópico

MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO

El microscopio compuesto

Un microscopio compuesto es un microscopio óptico que tiene más de un lente. Los microscopios compuestos se utilizan especialmente para examinar objetos transparentes, o cortados en láminas tan finas que se transparentan. Se emplea para aumentar o ampliar las imágenes de objetos y organismos no visibles a simple vista. El microscopio óptico común está conformado por tres sistemas:

• El sistema mecánico está constituido por una serie de piezas en las que van instaladas las lentes, que permiten el movimiento para el enfoque.
  
• El sistema óptico comprende un conjunto de lentes, dispuestas de tal manera que producen el aumento de las imágenes que se observan a través de ellas.
  
• El sistema de iluminación comprende las partes del microscopio que reflejan, transmiten y regulan la cantidad de luz necesaria para efectuar la observación a través del microscopio.

La parte mecánica del microscopio.

La parte mecánica del microscopio comprende el pie, el tubo, el revólver, el asa, la platina, el carro, el tornillo macrométrico y el tornillo micrométrico. Estos elementos sostienen la parte óptica y de iluminación; además, permiten los desplazamientos necesarios para el enfoque del objeto.


· El pie. Constituye la base sobre la que se apoya el microscopio y tiene por lo general forma de Y o bien es rectangular.
· El tubo. Tiene forma cilíndrica y está ennegrecido internamente para evitar las molestias que ocasionan los reflejos de la luz. En su extremidad superior se colocan los oculares.
· El revólver. Es una pieza giratoria provista de orificios en los que se enroscan los objetivos. Al girar el revólver, los objetivos pasan por el eje del tubo y se colocan en posición de trabajo, lo que se nota por el ruido de un piñón que lo fija.
· La columna, llamada también asa o brazo, es una pieza colocada en la parte posterior del aparato. Sostiene el tubo en su porción superior y por el extremo inferior se adapta al pie.
· La platina. Es una pieza metálica plana en la que se coloca la preparación u objeto que se va a observar. Presenta un orificio, en el eje óptico del tubo, que permite el paso de los rayos luminosos a la preparación. La platina puede ser fija, en cuyo caso permanece inmóvil; en otros casos puede ser giratoria; es decir, mediante tornillos laterales puede centrarse o producir movimientos circulares.
· Carro. Es un dispositivo, colocado sobre la platina, que permite deslizar la preparación con movimiento ortogonal de adelante hacia atrás y de derecha a izquierda.
· El tornillo macrométrico. Girando este tornillo, asciende o desciende el tubo del microscopio, deslizándose en sentido vertical gracias a una cremallera. Estos movimientos largos permiten el enfoque rápido de la preparación.
· El tornillo micrométrico. Mediante el movimiento casi imperceptible que produce al deslizar el tubo o la platina, se logra el enfoque exacto y nítido de la preparación. Lleva acoplado un tambor graduado en divisiones de 0,001 mm., que se utiliza para precisar sus movimientos y puede medir el espesor de los objetos.

Sistema óptico

· El sistema óptico es el encargado de reproducir y aumentar las imágenes mediante el conjunto de lentes que lo componen. Está formado por los oculares y los objetivos. El objetivo proyecta una imagen de la muestra que el ocular luego amplía.

Los oculares:

· Están constituidos generalmente por dos lentes, dispuestas sobre un tubo corto. Los oculares más generalmente utilizados son los de: 8X, 10X, 12,5X, 15X. La X se utiliza para expresar en forma abreviada los aumentos.

Los objetivos:

· se disponen en una pieza giratoria denominada revólver y producen el aumento de las imágenes de los objetos y organismos, y, por tanto, se hallan cerca de la preparación que se examina. Los objetivos utilizados corrientemente son de dos tipos: objetivos secos y objetivos de inmersión

Los objetivos secos

· Se utilizan sin necesidad de colocar sustancia alguna entre ellos y la preparación. En la cara externa llevan una serie de índices que indican el aumento que producen, la abertura numérica y otros datos. Así, por ejemplo, si un objetivo tiene estos datos: plan 40/0,65 y 160/0,17, significa que el objetivo es planacromático, su aumento 40 y su abertura numérica 0,65, calculada para una longitud de tubo de 160 mm. El número de objetivos varía con el tipo de microscopio y el uso a que se destina. Los aumentos de los objetivos secos más frecuentemente utilizados son: 6X, 10X, 20X, 45X y 60X.

El objetivo de inmersión

· Está compuesto por un complicado sistema de lentes. Para observar a través de este objetivo es necesario colocar una gota de aceite de cedro entre el objetivo y la preparación, de manera que la lente frontal entre en contacto con el aceite de cedro. Generalmente, estos objetivos son de 100X y se distingue por uno o dos círculos o anillos de color negro que rodea su extremo inferior.

Sistema de iluminación

Este sistema tiene como finalidad dirigir la luz natural o artificial de tal manera que ilumine la preparación u objeto que se va a observar en el microscopio de la manera adecuada. Comprende los siguientes elementos:

Fuente de iluminación

Se trata generalmente de una lámpara incandescente de tungsteno sobrevoltada. Por delante de ella se sitúa un condensador (una lente convergente) e, idealmente, un diafragma de campo, que permite controlar el diámetro de la parte de la preparación que queda iluminada, para evitar que exceda el campo de observación produciendo luces parásitas.

El espejo

necesario si la fuente de iluminación no está construida dentro del microscopio y ya alineada con el sistema óptico, como suele ocurrir en los microscopios modernos. Suele tener dos caras: una cóncava y otra plana. Goza de movimientos en todas las direcciones. La cara cóncava se emplea de preferencia con iluminación artificial, y la plana, para iluminación natural (luz solar).

Condensador

El condensador está formado por un sistema de lentes, cuya finalidad es concentrar luminosos los rayos sobre el plano de la preparación, formando un cono de luz con el mismo ángulo que el del campo del objetivo. El condensador se sitúa debajo de la platina y su lente superior es generalmente planoconvexa, quedando la cara superior plana en contacto con la preparación cuando se usan objetivos de gran abertura (los de mayor ampliación); existen condensadores de inmersión, que piden que se llene con aceite el espacio entre esa lente superior y la preparación. La abertura numérica máxima del condensador debe ser al menos igual que la del objetivo empleado, o no se logrará aprovechar todo su poder separador. El condensador puede deslizarse verticalmente sobre un sistema de cremallera mediante un tornillo, bajándose para su uso con objetivos de poca potencia.

Diafragma

El condensador está provisto de un diafragma-iris, que regula su abertura para ajustarla a la del objetivo. Puede emplearse, de manera irregular, para aumentar el contraste, lo que se hace cerrándolo más de lo que conviene si se quiere aprovechar la resolución del sistema óptico

Trayectoria del rayo de luz a través del microscopio

El haz luminoso procedente de la lámpara pasa directamente a través del diafragma al condensador. Gracias al sistema de lentes que posee el condensador, la luz es concentrada sobre la preparación a observar. El haz de luz penetra en el objetivo y sigue por el tubo hasta llegar al ocular, donde es captado por el ojo del observador

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Propiedades del microscopio

Poder separador

También llamado a veces poder de resolución, es una cualidad del microscopio, y se define como la distancia mínima entre dos puntos próximos que pueden verse separados. El ojo normal no puede ver separados dos puntos cuando su distancia es menor a una décima de milímetro. En el microscopio viene limitado por la longitud de onda de la radiación empleada; en el microscopio óptico, el poder separador máximo conseguido es de 0,2 décimas de micrómetro (la mitad de la longitud de onda de la luz azul), y en el microscopio electrónico, el poder separador llega hasta 10 Å.

Poder de definición

Se refiere a la nitidez de las imágenes obtenidas, sobre todo respecto a sus contornos. Esta propiedad depende de la calidad y de la corrección de las aberraciones de las lentes utilizadas

Ampliación del microscopio

En términos generales se define como la relación entre el diámetro aparente de la imagen y el diámetro o longitud del objeto. Esto quiere decir que si el microscopio aumenta 100 diámetros un objeto, la imagen que estamos viendo es 100 veces mayor linealmente que el tamaño real del objeto (la superficie de la imagen será 1002, es decir 10.000 veces mayor). Para calcular el aumento que está proporcionando un microscopio, basta multiplicar los aumentos respectivos debidos al objetivo y el ocular empleados. Por ejemplo, si estamos utilizando un objetivo de 45X y un ocular de 10X, la ampliación con que estamos viendo la muestra será: 45X x 10X = 450X, lo cual quiere decir que la imagen del objeto está ampliada 450 veces, también expresado como 450 diámetros.

Campo del microscopio

Se denomina campo del microscopio al círculo visible que se observa a través del microscopio. También podemos definirlo como la porción del plano visible observado a través del microscopio. Si el aumento es mayor, el campo disminuye, lo cual quiere decir que el campo es inversamente proporcional al aumento del microscopio. Para medir el diámetro del campo del microscopio con cualquiera de los objetivos se utiliza el micrómetro, al que se hará referencia en el siguiente punto.

Mantenimiento del microscopio

El microscopio debe estar protegido del polvo, humedad y otros agentes que pudieran dañarlo. Mientras no esté en uso debe guardarse en un estuche o gabinete, o bien cubrirlo con una bolsa plástica o campana de vidrio.

Las partes mecánicas

Deben limpiarse con un paño suave; en algunos casos, éste se puede humedecer con xilol para disolver ciertas manchas de grasa, aceite de cedro, parafina, etc. Que hayan caído sobre las citadas partes.

La limpieza de las partes ópticas requiere precauciones especiales

Para ello debe emplearse papel "limpiante" que expiden las casas distribuidoras de material de laboratorio. Nunca deben tocarse las lentes del ocular, objetivo y condensador con los dedos; las huellas digitales perjudican la visibilidad, y cuando se secan resulta trabajoso eliminarlas.

Para una buena limpieza de las lentes

Puede humedecerse el papel "limpiante" con éter y luego pasarlo por la superficie cuantas veces sea necesario. El aceite de cedro que queda sobre la lente frontal del objetivo de inmersión debe quitarse inmediatamente después de finalizada la observación. Para ello se puede pasar el papel "limpialentes" impregnado con una gota de xilol. Para guardarlo se acostumbra colocar el objetivo de menor aumento sobre la platina y bajado hasta el tope; el condensador debe estar en su posición más baja, para evitar que tropiece con alguno de los objetivos. Guárdese en lugares secos, para evitar que la humedad favorezca la formación de hongos. Ciertos ácidos y otras sustancias químicas que producen emanaciones fuertes, deben mantenerse alejados del microscopio.

Conclusiones
El Microscopio es: cualquiera de los distintos tipos de instrumentos que se utilizan para obtener una imagen aumentada de objetos minúsculos o detalles muy pequeños de los mismos. El microscopio simple o lente de aumento es el más sencillo de todos y consiste en realidad en una lupa que agranda la imagen del objeto observado. Las evidentes limitaciones de este sistema, conocido desde la antigüedad, y el desarrollo de la óptica y de la construcción de lentes hizo que surgieran en el siglo XVII los microscopios compuestos, diestramente utilizados por el holandés Antonie van Leewenhock en el estudio de la microfauna de los estanques y charlas. Estas observaciones, unidas a las de Robert Hooke, establecieron la microscopia como poderosa herramienta científica.

Normas generales de uso del laboratorio

Para el desarrollo de las prácticas es conveniente tener en cuenta algunas normas elementales que deben ser observadas con toda escrupulosidad

1. Antes de realizar una práctica, debe leerse detenidamente para adquirir una idea clara de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre anotados cuidadosamente apenas se conozcan.
   
2. El orden y la limpieza deben presidir todas las experiencias de laboratorio. En consecuencia, al terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente el material que se ha utilizado.
   
3. Cada grupo de prácticas se responsabilizará de su zona de trabajo y de su material.
   
4. Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para asegurarse de que es el que se necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.
   
5. No devolver nunca a los frascos de origen los sobrantes de los productos utilizados sin consultar con el profesor.
   
6. No tacar con las manos y menos con la boca los productos químicos.
   
7. Todo el material, especialmente los aparatos delicados, como lupas y microscopios, deben manejarse con cuidado evitando los golpes o el forzar sus mecanismos.
   
8. Los productos inflamables (gases, alcohol, éter, etc.) deben mantenerse alejados de las llamas de los mecheros. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos productos, se hará al baño María, nunca directamente a la llama. Si se manejan mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al apagar la llama.
   
9. Cuando se manejan productos corrosivos (ácidos, álcalis, etc.) deberá hacerse con cuidado para evitar que salpiquen el cuerpo o los vestidos. Nunca se verterán bruscamente en los tubos de ensayo, sino que se dejarán resbalar suavemente por su pared.
   
10. Cuando se quiera diluir un ácido, nunca se debe echar agua sobre ellos; siempre al contrario: ácido sobre agua.
    
11. Cuando se vierta un producto líquido, el frasco que lo contiene se inclinará de forma que la etiqueta quede en la parte superior para evitar que si escurre líquido se deteriore dicha etiqueta y no se pueda identificar el contenido del frasco.
    
12. No pipetear nunca con la boca. Se debe utilizar la bomba manual, una jeringuilla o artilugio que se disponga en el Centro.
    
13. Las pipetas se cogerán de forma que sea el dedo índice el que tape su extremo superior para regular la caída de líquido.
    
14. Al enrasar un líquido con una determinada división de escala graduada debe evitarse el error de paralaje levantando el recipiente graduado a la altura de los ojos para que la visual al enrase sea horizontal.
    
15. Cuando se calientan a la llama tubos de ensayo que contienen líquidos debe evitarse la ebullición violenta por el peligro que existe de producir salpicaduras. El tubo de ensayo se acercará a la llama inclinado y procurando que ésta actúe sobre la mitad superior del contenido y, cuando se observe que se inicia la ebullición rápida, se retirará, acercándolo nuevamente a los pocos segundos y retirándolo otra vez al producirse una nueva ebullición, realizando así un calentamiento intermitente. En cualquier caso, se evitará dirigir la boca del tubo hacia la cara o hacia otra persona.
    
16. Cualquier material de vidrio no debe enfriarse bruscamente justo después de haberlos calentado con el fin de evitar roturas.
    
17. Los cubreobjetos y portaobjetos deben cogerse por los bordes para evitar que se engrasen.
    

OBJETIVO: El alumno técnico en Laboratorio clínico aprenderá a usar y manejar adecuadamente el microscopio, aplicándolo en las diferentes áreas del laboratorio teniendo como finalidad el enfoque de los diferentes objetos que se le indiquen.

INTRODUCCION: Los alumnos de laboratorio clínico, deben de utilizar el microscopio de forma adecuada aplicando los conocimientos anteriormente aprendidos, para que puedan obtener un mejor funcionamiento y manejo del mismo ya que en el podrán observar diferentes estructuras diminutas que no se alcanzan a ver de forma microscópica.

MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO
Partes de un microscopio óptico

INSTRUCCIÓN:
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:

SISTEMA ÓPTICO
1. OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
2. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
3. CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
4. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
5. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.

SISTEMA MECÁNICO
1. SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
2. PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
3. CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular…
4. REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
5. TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.

4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.

INSTRUCCIÓN:
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:

SISTEMA ÓPTICO
1. OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
2. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
3. CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
4. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
5. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.

SISTEMA MECÁNICO
SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular…
REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.

4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.

MANEJO DEL MICROSCOPIO

1. 
   Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina completamente. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones.
2. 
   Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas
3. 
   Comenzar la observación con el objetivo de 4x (ya está en posición) o colocar el de 10 aumentos (10x) si la preparación es de bacterias.
4. 
   1. Para realizar el enfoque:
   a.- Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo macrométrico.
   Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de
   incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose dañar alguno de ellos o ambos
   
   b.- Mirando, ahora sí, a través de los oculares, ir separando lentamente el objetivo de la
   preparación con el macrométrico y, cuando se observe algo nítida la muestra, girar el
   micrométrico hasta obtener un enfoque fino.
   
5. 
   Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las precauciones anteriores y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó con el objetivo de inmersión.
   
6. 
   EMPLEO DEL OBJETIVO DE INMERSIÓN:
   A.- Bajar totalmente la platina
   B.- Subir totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona
   que se va a visualizar y donde habrá que echar el aceite.
   C.- Girar el revólver hacia el objetivo de inmersión dejándolo a medio camino entre éste y el de
   x40.
   D.- Colocar una gota mínima de aceite de inmersión sobre el círculo de luz.
   E.- Terminar de girar suavemente el revólver hasta la posición del objetivo de inmersión.
   F.- Mirando directamente al objetivo, subir la platina lentamente hasta que la lente toca la gota de
   aceite. En ese momento se nota como si la gota ascendiera y se adosara a la lente.
   G.- Enfocar cuidadosamente con el micrométrico. La distancia de trabajo entre el objetivo de inmersión y la preparación es mínima, aun menor que con el de 40x por lo que el riesgo de accidente es muy grande.
   H.- Una vez se haya puesto aceite de inmersión sobre la preparación, ya no se puede volver a usar el objetivo 40x sobre esa zona, pues se mancharía de aceite. Por tanto, si desea enfocar otro campo, hay que bajar la platina y repetir la operación desde el paso 3.
   I.- Una vez finalizada la observación de la preparación se baja la platina y se coloca el objetivo de menor aumento girando el revólver. En este momento ya se puede retirar la preparación de la platina. Nunca se debe retirar con el objetivo de inmersión en posición de observación.
   J.- Limpiar el objetivo de inmersión con cuidado empleando un papel especial para óptica. Comprobar también que el objetivo 40x está perfectamente limpio.

MANTENIMIENTO Y PRECAUCIONES

1. 
   Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda.
   
2. Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo
3. 
   Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica.
4. 
   No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio.
5. 
   Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción.
6. 
   No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador)
7. 
   El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular.
8. 
   Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol.
9. 
   Es conveniente limpiar y revisar siempre los microscopios al finalizar la sesión práctica y, al acabar el curso, encargar a un técnico un ajuste y revisión general de los mismos.